Università degli studi di Pavia
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Novara CV
Nome: Francesca Novara
Indirizzo: Via Tasso, 48
27100 Pavia
Cell. 339 1328508
Tel. casa 0382 465272
e-mail: francesca.novara@unipv.it
e-mail: francesca.novara@microgenomics.it
Data di nascita: 2 agosto 1981
Luogo di nascita: Agrigento
FORMAZIONE:
Luglio 2000:
Diploma di maturità scientifica presso il Liceo Scientifico “A. Sciascia” di Canicattì (AG) con la votazione di 100/100.
Settembre 2000 – Luglio 2003:
Corso di laurea triennale in Scienze Biologiche della facoltà di Scienze Matematiche Fisiche e Naturali all'Università degli Studi di Pavia.
A.A. 2002-2003:
Internato di tesi di laurea presso il laboratorio di Genetica Umana-Genetica dei Tumori diretto dalla prof.ssa G. N. Ranzani (Dipartimento di Genetica e Microbiologia dell’Università di Pavia).
Luglio 2003:
Laurea Triennale in Scienze Biologiche con votazione di 110/110 e lode. Titolo della tesi di laurea: “Gli STS nel genoma umano, analisi mediante PCR”.
Settembre 2003 – Luglio 2005:
Corso di Laurea Specialistica in “Biologia Sperimentale ed Applicata” indirizzo Biologia Umana e Scienze Biomediche della facoltà di Scienze Matematiche Fisiche e Naturali all'Università degli Studi di Pavia.
A.A. 2003-2004, A.A. 2004-2005:
Internato di tesi di laurea presso il laboratorio di Citogenetica e Mutagenesi diretto dalla prof.ssa E. Raimondi (Dipartimento di Genetica e Microbiologia dell’Università di Pavia).
Luglio 2005:
Laurea Specialistica in Biologia Sperimentale ed Applicata con votazione di 110/110 e lode. Titolo della tesi di laurea: “Evoluzione del cariotipo dei primati: ruolo svolto da una famiglia di sequenze a basso numero di copie isolata dal cromosoma 9 umano”.
A.A. 2005-2006:
Ammissione alla Scuola di Specializzazione in “Genetica Medica” presso l’università degli studi di Pavia (direttore prof.ssa Orsetta Zuffardi).
Anno 2006:
Abilitazione alla professione di biologa.
Anno 2009
Iscrizione all’albo professionale dei Biologi.
A.A. 2009-2010:
Specializzazione in “Genetica Medica” con votazione di 50/50 e lode. Titolo della tesi: “Esiste un orologio biologico anche per gli uomini?”.
Ammissione con borsa di studio alla Scuola di Dottorato in Scienze della Vita, corso di dottorato Patologia e Genetica Medica (direttore dottorato prof. Cesare Danesino, ciclo XXV, tutor Prof.ssa O. Zuffardi). Il progetto di ricerca principale del dottorato è basato sull’analisi di pazienti con epilessia genetica tramite array-CGH per la possibile identificazione di alterazioni genetiche causative di patologia.
Attività lavorative:
Ottobre 2005 – oggi:
Lavora nel laboratorio di Diagnosi Citogenetica Pre e Post-natale e Molecolare, diretto dalla Prof. Orsetta Zuffardi, presso il Dipartimento di Patologia Umana ed Ereditaria sezione di Biologia Generale e Genetica Medica dell’Università di Pavia. In questi anni ha maturato una grande esperienza in ambito della tecnica di array-CGH applicata sia in ambito tumorale che costituzionale. Si è occupata e si occupa di diversi progetti in cui vengono applicate anche altre tecniche di biologia e citogenetica molecolare.
Anno Accademico 2008-2009:
Titolare di una collaborazione di tutorato presso la Facoltà di Medicina e Chirurgia, Università di Pavia.
Marzo 2009:
Training presso il laboratorio di Trascrittoma e Proteomica (responsabile Prof. Antonino Cattaneo) presso la Fondazione EBRI (European Brain Research Institute) Rita Levi-Montalcini (Roma) per apprendere la tecnica di gene-expression.
Anno Accademico 2009-2010:
Titolare di una collaborazione di tutorato presso la Facoltà di Medicina e Chirurgia.
Titolare dell’insegnamento “Molecular Biology and Genetics (practice)” della Facoltà di Medicina e Chirurgia (corso in inglese).
Ottobre 2009 – oggi:
Amministratore Unico e Tecnico di Laboratorio del Laboratorio di Analisi Genetiche, spin-off dell’Università di Pavia, Microgenomics s.r.l.
PARTECIPAZIONE A CORSI E CONVEGNI:
Anno 2005
· 7° Convegno FISV, Riva del Garda.
Anno 2006
· 2nd International Meeting on Cryptic Chromosomal rearrangements in Mental Retardation and Autism, Troina (EN).
· 3° Corso di Formazione in Ematologia Oncologica, “I Linfomi Maligni: novità e progressi”, Milano.
Anno 2007
· XIV Convention Scientifica Telethon, Salsomaggiore Terme.
· Pan-European Emerging Trends in Hematologic Malignancies, Milano.
· State of the Art Symposia: Nuove opportunità di cura per i Linfomi non-Hodgkin, Pavia.
· 3rd International Meeting on Cryptic Chromosomal rearrangements in Mental Retardation and Autism, Troina (EN).
· 6° Corso di Formazione avanzata “Predizione molecolare e bioinformatica in ematologia/oncologia”, Collegio Ghislieri, Pavia.
· ESGH Conference 2007, Nizza.
· X Congresso Nazionale SIGU, Montecatini Terme.
· Corso di aggiornamento: Predisposizioni ereditarie allo sviluppo di neoplasie pediatriche, Montecatini Terme.
· Incontro di Genetica Clinica SIGU, Napoli.
· Incontro di Genetica Medica dal titolo Anomalie Cromosomiche Criptiche: analisi mediante CGH array, Varese.
Anno 2008
· Congresso: Array-CGH: applicazioni nel ritardo mentale e nei tumori, Siena.
· XX Corso di aggiornamento: genetica delle epilessie ed epilessie genetiche, Venezia.
· Simposio Illumina “From Whole-Genome to Whole-Solution, Disease Analysis Tools for the Next Generation”, Milano.
· Corso: Pazienti con diagnosi rare: difficoltà e previsioni, Pavia.
· XI Congresso Nazionale SIGU, Genova.
Anno 2009
· XV Convention Telethon, Riva del Garda (TN).
· 5th International Meeting on Cryptic Chromosomal rearrangements in Mental Retardation and Autism, Troina (EN).
· 4th Course in Clinical Cytogenetics, Goldrain Castle, Italy (Faculty member).
· XII Congresso Nazionale SIGU, Torino.
Anno 2011
· ECA, 2011, Porto (Portogallo).
· Corso Avanzato di Citogenetica Costituzionale: verso il cariotipo Molecolare? Genova.
· XIV Congresso Nazionale SIGU, Milano.
COMPETENZE ACQUISITE:
Tecniche Citogenetiche
– Colture in vitro di cellule somatiche.
– Preparazione cromosomiche da linee cellulari stabilizzate e da culture primarie.
– Allestimento di preparati cromosomici e ricostruzione cariotipi umani.
– Ibridazione in situ: FISH su nuclei interfasici e cromosomi metafisici. Preparazione e marcatura sonde.
– Ibridazione in situ comparativa: array-CGH.
– Microscopia ottica e a fluorescenza.
Tecniche Biomolecolari
– Estrazione di DNA da sangue, liquido amniotico, villi coriali, cellule mononucleate separate da midollo osseo, colture cellulari, mucosa buccale e saliva.
– Estrazione RNA da sangue e tessuti.
– Uso di strumenti spettofotometrici per la quantificazione di acidi nucleici.
– Amplificazione di DNA mediante PCR.
– Elettroforesi su gel di agarosio per la separazione di prodotti di PCR.
– MS-PCR: scelta e disegno primer, amplificazione del segmento genomico ed analisi dei risultati.
– QPCR: disegno primer e amplificazione del segmento genomico ed analisi dei risultati.
– Analisi di database genomici.
– Analisi di microsatelliti utilizzando STS.
– Analisi di mutazione genica mediante sequenziamento standard.
Tecniche Microbiologiche di base
– Metodologie di coltura batterica.
– Estrazione di DNA plasmidico e di BAC.
Array-CGH
– Digestione e marcatura campioni da analizzare.
– Ibridazione su piattaforme ad oligomeri (Agilent).
– Utilizzo dei software specifici per la scansione delle piattaforme (Agilent Scanner Control) ed analisi dei risultati (Feature Extraction, CGH Analytics, DNA Analytics, Agilent).
Gene-expression
– Controllo qualità RNA con BioAnalizer (Agilent) e marcatura campioni da analizzare.
– Ibridazione su piattaforme ad oligomeri (Agilent).
– Utilizzo dei software specifici per la scansione delle piattaforme (Agilent Scanner Control) ed estrazione dei risultati (Feature Extraction).
Database genomici e non solo
– NCBI, UCSC, Ensembl, Database of Genomic Variants, Eurexpress, Endeavour, String, e-Array, Mutation Taster, ecc.
LINGUE CONOSCIUTE
Buona conoscenza della lingua inglese sia scritta che parlata.
CONOSCENZE INFORMATICHE
Utilizzo di Personal Computer su piattaforme PC compatibili (DOS e Windows) e Mac-OS.
Softwares
Applicativi: Office 2000, Office XP, Office 2003, Office 2007, Office 2010:
Word: Ottima
PowerPoint: Ottima
Excel: Ottima
Analisi di immagini: Adobe Photoshop CS
Analisi array-CGH: Agilent Scanner Control software v7.0
Feature Extraction software v9.1 e v10.1
CGH analytics v3.4.27 e v3.5
Agilent Genomic Workbench Standard Edition 6.5.0.58
Analisi di dati molecolari: Chromas v1.45
GenScanView 1.1/4
Sequence Scanner v1.0
Peak Scanner software v1.0
Indirizzo: Via Tasso, 48
27100 Pavia
Cell. 339 1328508
Tel. casa 0382 465272
e-mail: francesca.novara@unipv.it
e-mail: francesca.novara@microgenomics.it
Data di nascita: 2 agosto 1981
Luogo di nascita: Agrigento
FORMAZIONE:
Luglio 2000:
Diploma di maturità scientifica presso il Liceo Scientifico “A. Sciascia” di Canicattì (AG) con la votazione di 100/100.
Settembre 2000 – Luglio 2003:
Corso di laurea triennale in Scienze Biologiche della facoltà di Scienze Matematiche Fisiche e Naturali all'Università degli Studi di Pavia.
A.A. 2002-2003:
Internato di tesi di laurea presso il laboratorio di Genetica Umana-Genetica dei Tumori diretto dalla prof.ssa G. N. Ranzani (Dipartimento di Genetica e Microbiologia dell’Università di Pavia).
Luglio 2003:
Laurea Triennale in Scienze Biologiche con votazione di 110/110 e lode. Titolo della tesi di laurea: “Gli STS nel genoma umano, analisi mediante PCR”.
Settembre 2003 – Luglio 2005:
Corso di Laurea Specialistica in “Biologia Sperimentale ed Applicata” indirizzo Biologia Umana e Scienze Biomediche della facoltà di Scienze Matematiche Fisiche e Naturali all'Università degli Studi di Pavia.
A.A. 2003-2004, A.A. 2004-2005:
Internato di tesi di laurea presso il laboratorio di Citogenetica e Mutagenesi diretto dalla prof.ssa E. Raimondi (Dipartimento di Genetica e Microbiologia dell’Università di Pavia).
Luglio 2005:
Laurea Specialistica in Biologia Sperimentale ed Applicata con votazione di 110/110 e lode. Titolo della tesi di laurea: “Evoluzione del cariotipo dei primati: ruolo svolto da una famiglia di sequenze a basso numero di copie isolata dal cromosoma 9 umano”.
A.A. 2005-2006:
Ammissione alla Scuola di Specializzazione in “Genetica Medica” presso l’università degli studi di Pavia (direttore prof.ssa Orsetta Zuffardi).
Anno 2006:
Abilitazione alla professione di biologa.
Anno 2009
Iscrizione all’albo professionale dei Biologi.
A.A. 2009-2010:
Specializzazione in “Genetica Medica” con votazione di 50/50 e lode. Titolo della tesi: “Esiste un orologio biologico anche per gli uomini?”.
Ammissione con borsa di studio alla Scuola di Dottorato in Scienze della Vita, corso di dottorato Patologia e Genetica Medica (direttore dottorato prof. Cesare Danesino, ciclo XXV, tutor Prof.ssa O. Zuffardi). Il progetto di ricerca principale del dottorato è basato sull’analisi di pazienti con epilessia genetica tramite array-CGH per la possibile identificazione di alterazioni genetiche causative di patologia.
Attività lavorative:
Ottobre 2005 – oggi:
Lavora nel laboratorio di Diagnosi Citogenetica Pre e Post-natale e Molecolare, diretto dalla Prof. Orsetta Zuffardi, presso il Dipartimento di Patologia Umana ed Ereditaria sezione di Biologia Generale e Genetica Medica dell’Università di Pavia. In questi anni ha maturato una grande esperienza in ambito della tecnica di array-CGH applicata sia in ambito tumorale che costituzionale. Si è occupata e si occupa di diversi progetti in cui vengono applicate anche altre tecniche di biologia e citogenetica molecolare.
Anno Accademico 2008-2009:
Titolare di una collaborazione di tutorato presso la Facoltà di Medicina e Chirurgia, Università di Pavia.
Marzo 2009:
Training presso il laboratorio di Trascrittoma e Proteomica (responsabile Prof. Antonino Cattaneo) presso la Fondazione EBRI (European Brain Research Institute) Rita Levi-Montalcini (Roma) per apprendere la tecnica di gene-expression.
Anno Accademico 2009-2010:
Titolare di una collaborazione di tutorato presso la Facoltà di Medicina e Chirurgia.
Titolare dell’insegnamento “Molecular Biology and Genetics (practice)” della Facoltà di Medicina e Chirurgia (corso in inglese).
Ottobre 2009 – oggi:
Amministratore Unico e Tecnico di Laboratorio del Laboratorio di Analisi Genetiche, spin-off dell’Università di Pavia, Microgenomics s.r.l.
PARTECIPAZIONE A CORSI E CONVEGNI:
Anno 2005
· 7° Convegno FISV, Riva del Garda.
Anno 2006
· 2nd International Meeting on Cryptic Chromosomal rearrangements in Mental Retardation and Autism, Troina (EN).
· 3° Corso di Formazione in Ematologia Oncologica, “I Linfomi Maligni: novità e progressi”, Milano.
Anno 2007
· XIV Convention Scientifica Telethon, Salsomaggiore Terme.
· Pan-European Emerging Trends in Hematologic Malignancies, Milano.
· State of the Art Symposia: Nuove opportunità di cura per i Linfomi non-Hodgkin, Pavia.
· 3rd International Meeting on Cryptic Chromosomal rearrangements in Mental Retardation and Autism, Troina (EN).
· 6° Corso di Formazione avanzata “Predizione molecolare e bioinformatica in ematologia/oncologia”, Collegio Ghislieri, Pavia.
· ESGH Conference 2007, Nizza.
· X Congresso Nazionale SIGU, Montecatini Terme.
· Corso di aggiornamento: Predisposizioni ereditarie allo sviluppo di neoplasie pediatriche, Montecatini Terme.
· Incontro di Genetica Clinica SIGU, Napoli.
· Incontro di Genetica Medica dal titolo Anomalie Cromosomiche Criptiche: analisi mediante CGH array, Varese.
Anno 2008
· Congresso: Array-CGH: applicazioni nel ritardo mentale e nei tumori, Siena.
· XX Corso di aggiornamento: genetica delle epilessie ed epilessie genetiche, Venezia.
· Simposio Illumina “From Whole-Genome to Whole-Solution, Disease Analysis Tools for the Next Generation”, Milano.
· Corso: Pazienti con diagnosi rare: difficoltà e previsioni, Pavia.
· XI Congresso Nazionale SIGU, Genova.
Anno 2009
· XV Convention Telethon, Riva del Garda (TN).
· 5th International Meeting on Cryptic Chromosomal rearrangements in Mental Retardation and Autism, Troina (EN).
· 4th Course in Clinical Cytogenetics, Goldrain Castle, Italy (Faculty member).
· XII Congresso Nazionale SIGU, Torino.
Anno 2011
· ECA, 2011, Porto (Portogallo).
· Corso Avanzato di Citogenetica Costituzionale: verso il cariotipo Molecolare? Genova.
· XIV Congresso Nazionale SIGU, Milano.
COMPETENZE ACQUISITE:
Tecniche Citogenetiche
– Colture in vitro di cellule somatiche.
– Preparazione cromosomiche da linee cellulari stabilizzate e da culture primarie.
– Allestimento di preparati cromosomici e ricostruzione cariotipi umani.
– Ibridazione in situ: FISH su nuclei interfasici e cromosomi metafisici. Preparazione e marcatura sonde.
– Ibridazione in situ comparativa: array-CGH.
– Microscopia ottica e a fluorescenza.
Tecniche Biomolecolari
– Estrazione di DNA da sangue, liquido amniotico, villi coriali, cellule mononucleate separate da midollo osseo, colture cellulari, mucosa buccale e saliva.
– Estrazione RNA da sangue e tessuti.
– Uso di strumenti spettofotometrici per la quantificazione di acidi nucleici.
– Amplificazione di DNA mediante PCR.
– Elettroforesi su gel di agarosio per la separazione di prodotti di PCR.
– MS-PCR: scelta e disegno primer, amplificazione del segmento genomico ed analisi dei risultati.
– QPCR: disegno primer e amplificazione del segmento genomico ed analisi dei risultati.
– Analisi di database genomici.
– Analisi di microsatelliti utilizzando STS.
– Analisi di mutazione genica mediante sequenziamento standard.
Tecniche Microbiologiche di base
– Metodologie di coltura batterica.
– Estrazione di DNA plasmidico e di BAC.
Array-CGH
– Digestione e marcatura campioni da analizzare.
– Ibridazione su piattaforme ad oligomeri (Agilent).
– Utilizzo dei software specifici per la scansione delle piattaforme (Agilent Scanner Control) ed analisi dei risultati (Feature Extraction, CGH Analytics, DNA Analytics, Agilent).
Gene-expression
– Controllo qualità RNA con BioAnalizer (Agilent) e marcatura campioni da analizzare.
– Ibridazione su piattaforme ad oligomeri (Agilent).
– Utilizzo dei software specifici per la scansione delle piattaforme (Agilent Scanner Control) ed estrazione dei risultati (Feature Extraction).
Database genomici e non solo
– NCBI, UCSC, Ensembl, Database of Genomic Variants, Eurexpress, Endeavour, String, e-Array, Mutation Taster, ecc.
LINGUE CONOSCIUTE
Buona conoscenza della lingua inglese sia scritta che parlata.
CONOSCENZE INFORMATICHE
Utilizzo di Personal Computer su piattaforme PC compatibili (DOS e Windows) e Mac-OS.
Softwares
Applicativi: Office 2000, Office XP, Office 2003, Office 2007, Office 2010:
Word: Ottima
PowerPoint: Ottima
Excel: Ottima
Analisi di immagini: Adobe Photoshop CS
Analisi array-CGH: Agilent Scanner Control software v7.0
Feature Extraction software v9.1 e v10.1
CGH analytics v3.4.27 e v3.5
Agilent Genomic Workbench Standard Edition 6.5.0.58
Analisi di dati molecolari: Chromas v1.45
GenScanView 1.1/4
Sequence Scanner v1.0
Peak Scanner software v1.0
